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SERVICES PROPOSES  :

Le plateau technique IMAC de la SFR4207 QUASAV a pour vocation de proposer aux chercheurs de la SFR et de ses partenaires, et plus largement à la communauté scientifique et entrepreneuriale du pôle végétal angevin, un accès à des technologies et équipements indispensables à la conduite de travaux de recherche en microscopie et imagerie.

Le plateau technique IMAC met à disposition des compétences techniques et une aide à l’interprétation.

Sur le plateau, il est possible de réaliser les techniques classiques d’histologie (fixation, inclusions, coupes au microtome, colorations et analyses d’images, préparations extemporanées avec coupes au cryostat ou au vibratome, de cytologie (caryotype, hybridation in situ…) et d’observation en microscopie optique, électronique (MEB de paillasse) et photonique (microscopie à épifluorescence, microscopie confocale à balayage laser ou spinning disk). Les préparations pour la microscopie électronique à transmission sont réalisées en collaboration avec le service commun de microscopie de l’université d’Angers (SCIAM).

LOCALISATION :

Le plateau IMAC est situé au 1^er étage du bâtiment de la Maison de la Recherche du Campus du Végétal.

Sur cet espace de plus de 130m² dédié à l’imagerie, la SFR Quasav met à disposition les appareils pour les utilisateurs, en libre accès (utilisateurs formés et autonomes) ou environnés.

Les salles spécifiquement aménagées permettent la préparation d’échantillon, la microtomie (coupe), l’observation standard (champ large), l’observation spécifique (Confocal/MEB).

L'EQUIPE :

	Responsable du plateau : Aurélia Rolland
	aurelia.rolland@univ-angers.fr
	Tél. : 02.41.22.56.62
	bureau 1.92
	Responsable technique : Fabienne Simonneau
	fabienne.simonneau@ inra.fr
	Tél. : 02.41.22.56.62
	bureau 1.92
	Conseiller scientifique : David Macherel
	david.macherel@univ-angers.fr

MATERIELS DISPONIBLES :

Entrez dans l’univers fascinant des plantes et venez découvrir l’intimité de leur organisation cellulaire. Vous approcherez l’étonnante biodiversité anatomique des plantes et découvrirez l’adaptation extraordinaire de certaines structures pour assurer des fonctions particulières ou/et contribuer à la survie de la plante dans un environnement contraint (sècheresse, excès d’eau, milieu salé, forte luminosité…).

Le plateau technique IMAC est destiné aux études histologiques et cytologiques.

Le montant global du parc équipement sur le plateau s’élève à 935 k€.

Equipement de microtomie :

Reconnaître les différents tissus et analyser l’organisation interne des organes (tiges, racines, fleurs, fruits) est possible grâce aux techniques d'histo-cytologie et d'anatomie végétale.

Plusieurs étapes sont nécessaires :

La préparation des échantillons : fixation, déshydratation, inclusion en résine (glycol méthacrylate), la réalisation des coupes (main levée, vibratome, cryotome, microtomes).

La réalisation de colorations topologiques ou histochimiques, acquisition d'images, validation et interprétation.

>  Cryostat Leica CM3050 S-mot/tr (2006)

>  Microtome automatique Leica RM2165 (2001), avec contraste de phase

>  Microtome automatique Leica RM2265 (2013)

>  Vibratome MICROM HM 650V (2008)      

Vibratome MICROM HM 650V (2008)	Cryostat Leica CM3050 S-mot/tr (2006)	Microtome automatique Leica RM2165 (2001)	Microtome automatique Leica RM2265 (2013)

Observations et analyses :

Observations et analyses des tissus végétaux, de cellules, d’organites, de métabolites primaires et secondaires, de fonctions physiologiques après colorations topologiques / histochimiques ou utilisation de fluorochromes.

• Microscopie optique et photonique (fluorescence) :

>   Microscope Leica DM1000 (2006)

>   Microscope Olympus BH2 (1984)

>   Stéréomicroscope Olympus SZX16 (2007)

>   Microscope confocal à balayage laser NIKON A1 (2010) couplé au Spinning disk Crest-Optics X-Light V3 (2020)

>   Microscope Zeiss Axio Imager Z2, (2013)

>   Macroscope Zeiss Axio Zoom V16 (2019)

• Microscopie électronique :

>   Microscope électronique à balayage de table Phenom MEB PRO G2 (2012)

Photos des équipements :
Microscopie optique et photonique (fluorescence)
	Microscope Leica DM1000 (2006)			Microscope confocal à balayage laser NIKON A1 (2010) couplé au Spinning disk Crest-Optics X-Light V3 (2020)
	Microscope Olympus BH2 (1984)			Microscope Zeiss Axio Imager Z2, (2013)
	Stéréomicroscope Olympus SZX16 (2007)			Macroscope Zeiss Axio Zoom V16 (2019)
Microscope électronique à balayage de table Phenom MEB PRO G2 (2012)